Гистология у собаки это что за анализ

Цитология животных

Цитология животных — это морфологический метод диагностики, основанный на микроскопическом исследовании клеток организма. В большинстве случаев цитологические исследования помогают определить наличие или отсутствие злокачественных новообразований, характер опухолевого процесса. Но также с помощью цитологических исследований можно установить характер патологического процесса, оценить состояние внутренних органов и исследовать физиологические и аномальные естественные жидкости.

При использовании цитологии

Цитологическое исследование рекомендуется при подозрении на опухолевые процессы: любое новообразование может быть как доброкачественным, так и злокачественным, что существенно влияет на последующий план терапии и прогноз. Цитология также проводится при исследовании кист, когда обнаруживаются выпоты. У животных можно исследовать разные мазки на средний отит, например, чтобы выяснить, что вызывает воспаление (бактерии и какие, грибки – от этого зависит выбор препаратов для лечения). Цитология вагинального мазка используется для определения оптимального времени спаривания.

Какую информацию может предоставить цитология

Цитология — это наука о клетке. При любом цитологическом исследовании мы можем увидеть клетки исследуемой жидкости или мазка под микроскопом.

При цитологии крови в ней могут быть видны опухолевые клетки (при некоторых видах онкологии), паразиты могут быть обнаружены в крови (бабезии, дирофилярии). Даже лейкограмма, которая в большинстве случаев является частью рутинного клинического анализа крови, в основном является цитологическим исследованием мазка крови, в котором подсчитывается количество различных форменных элементов крови, что позволяет определить наличие воспалительного процесса в тело. , подозрение на нарушения со стороны органов кроветворения, наличие аутоиммунных реакций.

Цитологическое исследование мочи может дать информацию о количестве и типе мочевых кристаллов, образующих уролиты. Кроме того, в моче могут быть обнаружены клетки из эпителия мочевыводящих путей или даже из почек, что свидетельствует о необходимости дальнейшей диагностики мочевыделительной системы.там бактерии, могут быть опухолевые клетки, все это дает возможность поставить диагноз или определить направление дальнейшей диагностики питомца.

Цитологию можно взять и с поверхности кожи; дерматологи часто делают мазки и оттиски и смотрят, какие там клетки для кожных и внутрикожных паразитов. При диагностированном среднем отите необходимо выполнить мазок: средний отит может быть бактериальной природы, вызванным грибком (обычно эти отиты вторичны) или начаться в результате воздействия паразитов (например, отодекс).

Какая информация поможет ветеринару в лечении

Цитология – один из важнейших методов диагностики. В зависимости от того, есть бабезиоз в крови или нет, будет принято решение о лечении пироплазмоза и применении препаратов против этого вида паразита. Если мазок из уха собаки не показывает клещей, то причина среднего отита другая, потребуется другое лечение и т. д.

Видео-гайд: Гистология у собаки это что за анализ

---

Если жидкость, взятая из организма, стерильна, это подтверждает диагноз, если бактерии найти в нем, он будет другим диагностика и др. схема лечения животного.

Способ сбора клеток

В зависимости от объекта, цитологическое Образец также будет выбран. Мазок-оттиск или адгезивный тест чаще всего используются для цитологии кожи. Можно сделать более глубокую очистку. Для сбора материала для мазка Папаниколау можно использовать обычный ватный тампон.

Кровь для мазка чаще всего берут из периферических капилляров, например из уха, венозная кровь здесь не нужна.

При необходимости забора образца клеток для цитологического исследования новообразования оптимально использовать тонкоигольную биопсию; этот метод малоинвазивен, практически не повреждает обследуемый орган и окружающие ткани.

При взятии выпота диагностическую процедуру обычно совмещают с лечебной: жидкость аспирируют и уже берут пробу для цитологии.

В чем преимущества цитологии?

Цитология — относительно быстрый метод диагностики (в отличие, например, от гистологии). Позволяет быстро получить важную информацию для назначения лечения.

В большинстве случаев для взятия клеточных проб не требуется седация животного, какие-то специальные методы фиксации — мазок-оттиск или забор крови из уха практически безболезненны. Тонкоигольную биопсию можно выполнить под седацией, чтобы пациент оставался неподвижным. Такое исследование чаще всего проводят под визуальным контролем: с помощью ультразвукового датчика или эндоскопа, в ряде случаев место забора локализуется рентгенологически.

В ряде случаев без цитологического исследования правильная назначение дальнейшего лечения невозможно.

Какие существуют ограничения цитологического исследования?

Ограничения в выполнении цитологического исследования в основном связаны с диагностикой новообразований. Объем клеток, взятых на цитологию, невелик, возможны случаи, когда опухолевые клетки просто не попадают или получить полную картину для определения конкретного вида новообразования не представляется возможным.

Цитология малоинвазивная , противопоказаний немного, однако, если у животного нарушение свертываемости крови и врачу необходимо провести биопсию опухоли печени или почки, процедуру рекомендуется проводить в операционной под наблюдением хирурга для остановки кровотечения, если необходимый. Тонкая игла не вызовет кровотечения в подавляющем большинстве случаев.

Видео цитологического исследования животных — интервью с заведующим диагностической лабораторией:

Какая следующая процедура после цитологии

При диагностике опухолей после хирургического удаления необходимо провести гистологию новообразований и цитологию. В некоторых случаях при выявлении злокачественных опухолей может потребоваться иммуногистохимия для выбора наиболее подходящей химиотерапии. предписано.

в) Ветеринарный центр лечения и реабилитации животных «Зоостатус».
Варшавское шоссе, 125 корпус 1. тел. 8 (499) 372-27-37

Источник

Гистиоцитома у собак: диагностика, симптомы, проявления и лечение

Как возникает гистиоцитома у собак ? Онкология занимает одно из первых мест по заболеваемости. Причины этого высокого роста не известны. Ученые всего мира работают над лекарством от этой страшной болезни. Животные не являются исключением в этой проблеме. Домашние животные не могут сказать человеческим языком, что у них болит, что их беспокоит, поэтому ранняя диагностика затруднена. Врачи говорят: «Нужно вовремя обратиться, потому что лечение болезни на ранних стадиях проще, больше шансов на полное выздоровление». Но как насчет животных? Гистиоцитома у собак не была бы так опасна , если бы владелец знал о ее симптомах и немедленно обратился к специалистам ветеринарного центра . Поговорим о проявлениях заболевания у собак.

Общие сведения о гистиоцитомах у собак

Гистиоцитомы — группа злокачественных заболеваний кожи. Большинство из них хорошего качества. Но доброкачественные образования могут превратиться в злокачественные. Результаты лечения зависят от момента обращения в ветеринарный центр. Чем раньше внимательный хозяин заметит изменения в животном, тем лучше будет эффект. Некоторые ветеринары не считают гистиоцитому классической опухолью, так как ее текущее развитие и особенности больше похожи на реактивную гиперплазию определенных типов клеток. Вопреки общему мнению, бывают случаи, когда гистиоцитомы перерождаются в злокачественные опухоли.

Лучше всего воспринимать заболевание как потенциально опасное. Чаще случаи заболеваемости регистрируют у животных в возрасте 3 лет . Гистиоцитома реже встречается у пожилых животных. Ученые работают над причинами заболевания. Нет данных, подтверждающих какой-либо фактор образования опухоли.

Гистиоциты дают начало гемопоэтическим стволовым клеткам. Затем они дифференцируются в макрофаги и дендритные клетки. Заболевание протекает в различных формах.

Гистиоцитома кожи классифицируется как доброкачественное сосудистое соединительнотканное образование. Он вырабатывается клетками Лангерганса. Эта форма заболевания способна метастазировать в близлежащие лимфатические узлы и органы.

Гистиоцитоз дендритных клеток кожи формирует лимфогистиоцитарную пролиферацию кожи и подкожной клетчатки. В отличие от предыдущей формы гистиоцитомы, эта характеризуется ангиоцентрическим ростом и инвазией в глубокие слои дермы. Возникновение системного гистиоцитоза регистрируется не так часто.

Гистиоцитарная саркома вызывает ОКР. Она образуется макрофагами.

Что вызывает гистиоцитому у собак

Науке не известно, какие факторы способствуют развитию гистиоцитомы у собак . Отправной точкой могут быть канцерогены, радиация, иммунологические нарушения, генетические мутации. Заболевание чаще всего фиксируют у животных до 2-летнего возраста. Пол собаки значения не имеет. Однако по статистике чаще болеют гладкошерстные породы. Основная локализация опухоли : голова, предсердия, тазовые конечности, туловище собаки. Опухоль характеризуется быстрым ростом. Участок на теле лысый и изъязвленный. Изначально животное не испытывает какого-либо дискомфорта от опухолевого процесса . Иногда к опухолевому росту присоединяется вторичная микрофлора. Это приводит к зуду, наблюдается самотравматизация опухолевого участка. Иногда развитие опухоли останавливается и с последующим ее рассасыванием.

При кожном гистиоцитозе из клеток Ларгенганса в коже наблюдаются множественные образования, иногда вокруг рта. Узелки могут быть небольшими или объемными. Они красные с изъязвлениями. Шарпеи более восприимчивы.

Опухоль ИДК имеет вид множественных изъязвлений кожи. Их диаметр достигает 4 см, они появляются на голове, шее, туловище и конечностях. Статистики по породам нет. Животные заболевают в возрасте 4 лет.

Системный гистиоцитоз характеризуется лимфогистиоцитарным васкулитом. Васкулит вызывает воспаление кровеносных сосудов. Васкулит поражает лимфатические сосуды. Лимфогистиоцитарный васкулит представляет собой поражение внутренних слоев лимфатических сосудов. Множественные инфильтраты затем сливаются, образуя комковатую массу. опухоль. Дерматит и панникулит идут рука об руку. У животного:

• Нежелание есть.
• Впечатляющая потеря веса.
• Отек конъюнктивы, глазных яблок.

Предрасположены крупные собаки . К ним относится саркома Берне в возрасте от 2 до 7 лет.

Начало гистиоцитарной саркомы поражает селезенку, легкие, лимфатические узлы, костный мозг, суставы, кожу и подкожно-жировую клетчатку. Можно ли обнаружить несколько образований? как в одном органе, так и быстро распространяется на другие. Бернские зенненхунды, ротвейлеры, золотистые и гладкошерстные ретриверы более восприимчивы . При гемофагоцитарной гистиоцитарной саркоме происходит злокачественная пролиферация макрофагов в селезенке. Дисплей:

• Гемолитическая анемия.
• Тромбоцитопения.
• Билирубинемия.

Гистиоцитома у собак: методы диагностики опухолей

Проведение цитологического исследования позволяет поставить более точный диагноз. Этот метод заключается в исследовании материала под микроскопом . Для этого используют биопсию . Сделать пункцию в месте опухоли и собрать клеточный материал. Но и этот метод не дает полной уверенности в диагнозе, как при гистологическом исследовании. Гистологическое исследование дает полную и достоверную картину. Из опухоли готовят тонкий срез, фиксируют, окрашивают по определенной методике и исследуют под микроскопом. Для исключения наличия метастазов проводят рентгенологическое и ультразвуковое исследование.

Лечение гистиоцитомы у собак

Лечение гистиоцитомы у собак при поставлен точный диагноз. При обращении в ветеринарный центр вам предложат полное обследование, включая биопсию. Это наиболее информативный метод.

Ветеринар может быть вызван на дом для осмотра животного. Самое главное – не пускать болезнь на самотек, ведь опухоль, не доставляющая дискомфорта, может полностью перейти в злокачественную. Важно не потеряться. Если есть опухоль, ее необходимо наблюдать, поэтому в обязательном порядке следует обращаться к специалистам центра. Диагностическая биопсия играет важную роль.

Обратите внимание на количественное содержание ячеек. Появление измененных молодых клеток должно насторожить. Это показывает на прогрессирование гистиоцитомы у собак и возможность ее перехода в онкологию. Наличие лимфоцитов имеет хороший прогноз и свидетельствует о регрессии опухоли. Рассасывается.

Источник

Гистологическое исследование. Что это такое?

Часть 1. Отбор проб и фиксация

Автор: Ю. В. Ганкина, ветеринарный врач. Ветеринарная клиника неврологии, травматологии и реаниматологии, Санкт-Петербург.

Думаю, многие представляют себе гистологию как науку о тканях (каждый врач прошел курс гистологии в колледже, но большинство из них были давно). Поэтому, когда врач отправляет какой-то материал на гистологическое исследование, он понимает, что отправленные им ткани будут исследованы. Вроде бы все уже понятно, но все равно возникает много вопросов как у врачей, которые ведут материал, так и у патологоанатомов.
Зачем писать ссылку? Что там писать (почему так много, сами патологоанатомы не видят, что я отправил под микроскопом)? Зачем столько формалина? Почему не подходит формалин с белым осадком, который мы храним с момента основания клиники? Почему бы не выпить? Почему так долго? Зачем вам другие цвета? Почему бы вам не заняться электронной микроскопией, даже если у вас есть компьютер? И многое другое.
В серии своих статей я постараюсь ответить на некоторые вопросы врачей, объяснить, что происходит с материалом после того, как он попадает в недра лаборатории, и что пытаются в нем увидеть патологоанатомы.

Что получают при гистологическом исследовании?

Основные правила отбора материала

Принципы оценки краев хирургического вмешательства

Оценка краев хирургического вмешательства важна для определения прогноза, возможности повторный рост новообразования. Многие врачи хотят видеть эту информацию в заключении патологоанатома. Все так просто? Думаю, нет. Это сложная задача, в которой задействованы три компонента гистологического процесса: врач, отправляющий материал, лаборант/врач/техник, разрезающий материал, и патологоанатом, оценивающий стекло.
Создание срезов — это процесс, выполняемый с фиксированным материалом в лаборатории для последующего гистологического исследования, создания срезов и фиксации. Для этого отбирают мелкие кусочки (толщиной около 2-3 мм), что позволяет разместить их на стандартном предметном стекле.
Основная проблема заключается в том, чтобы дать возможность участникам этого процесса общаться друг с другом для достижения взаимопонимания.

Основные методы оценки хирургических краев:

• Метод поперечного сечения. Наиболее распространенный метод оценки хирургических краев (метод половины и четверти). Для этого образец сначала разрезают по короткой оси и формируют части полученного участка. Затем каждую половину разрезают по длинной оси, чтобы можно было получить срезы новообразования в разной плоскости (это может быть одна четверть среза новообразования или несколько тангенциальных (тангенциальных) срезов в случае большого образования) ( Фигура 2 ). Этот метод чаще всего используется в рутинной практике, но не может полностью оценить хирургические края. Распространение опухоли может быть неравномерным и клетки могут не включаться в срезы, полученные этим методом.
• Метод параллельной резки. Точно так же, как фиксирующий материал разрезается, образец разрезается на несколько частей. Надрезы делаются параллельно, через равные промежутки (рис. 1). Поэтому качество оценки хирургических краев напрямую зависит от количества таких разрезов, и увеличение этого количества может сказаться на стоимости исследования.
• Метод тангенциальной резки. Несколько тонких фрагментов (толщиной 2-3 мм) вырезают по касательной от края образца. При обнаружении в таких образцах неопластических клеток новообразование считается не полностью удаленным. Этот метод хорош и может быть более чувствителен, чем метод поперечного сечения, но он не позволяет оценить степень удаления края опухоли от краев хирургического вмешательства. Для более полной оценки целесообразнее сочетать методы поперечных и тангенциальных сечений.

При любом методе оценки хирургических краев важной информацией может быть информация о расположении опухоли по отношению к телу животного и точном расположении опухолевых клеток на краю. Для этого может быть уместным использование фотоматериала и красителей.

Для маркировки образцов можно использовать красители, подходящие для маркировки границ материалов, поверхностей, специальных зон. Они видны в гистологических препаратах и ​​не влияют на качество окрашивания. Доступны специальные гистологические красители, но также можно использовать водостойкие чернила. Краски наносятся специальными кистями или ватными палочками, после чего дают высохнуть в течение 5-10 минут. Затем материал следует поместить в фиксатор (с момента забора материала до помещения его в формалин должно пройти не более 30 минут). Если образец большой, его следует разрезать после покраски и сушки. В направлении указать, какие цвета используются для обозначения тех или иных границ/участков и т. д. Использование красителей предпочтительнее использования швейного материала разных цветов, с разным количеством стежков.
При взятии биоптата из желудочно-кишечного тракта материал берут с места повреждения. Образцы биопсии не следует брать из других мест, так как они могут сильно отличаться от основного поражения, и в этом случае ответ на исследование может удивить врача. При эндоскопической биопсии материал удаляют со слизистой стенки желудка или кишечника с помощью специальных биопсийных щипцов. В идеале, чтобы получить адекватный образец ткани, щипцы для биопсии должны быть ориентированы перпендикулярно слизистой оболочке органа при прохождении через эндоскоп. В целом, эта процедура достаточно проста. это выполняется в просвете желудка, но затруднено в более узких областях, таких как двенадцатиперстная кишка. При отсутствии специфических поражений берут 6-8 проб со слизистой в области дна и тела желудка, несколько проб из антрального отдела. При обнаружении явного патологического изменения такой материал отдают предпочтение в первую очередь.

При выявлении язвенного поражения материал берут с периферии и из центра (перфорация стенки). Хотя центральная часть язвы содержит некротизированную ткань, также могут быть получены диагностически значимые образцы. том же месте, при этом глубже в стенку и таким образом достигают патологического очага (хотя в этом случае производят полный забор). — выборка по толщине более уместна).
Образцы биопсии слизистой оболочки тонкой кишки должны быть достаточно глубокими, чтобы охватить всю длину ворсинок и области крипт. Следует иметь в виду, что при заборе очень плотного материала образцы могут быть слишком маленькими и очень восприимчивыми к артефактам, вызванным травмой челюсти щипцами (артефакты сжатия). Всемирная ветеринарная ассоциация мелких животных (WSAVA) рекомендует указывать в гистологическом описании качество образцов, чтобы врач понимал, насколько точен диагноз и насколько правильно собран материал.

Гистологическое исследование вскрытия материал является последним, о чем говорят врачи, но не по важности. «Лицо, не имеющее специальной подготовки в области ветеринарной патологии, не является «Лицо, не имеющее специальной подготовки в области ветеринарной патологии, не должно подходить к вскрытию с мыслью, что во время вскрытия будет поставлен диагноз»; Террелл и Стейси, 2007 г.). Часто диагноз нельзя поставить с уверенностью, пока не будет проведено гистологическое исследование. Материал в этом случае подбирает патологоанатом. Учитывайте правила крепления (см. ниже) и толщину образцов. Как правило, весь материал от животного помещают в один контейнер. Некоторые органы фиксированы целиком — головной и спинной мозг (кроме крупных животных, у которых головной мозг можно разрезать на 2-3 крупные части). Мелкие органы: гипофиз, надпочечники, щитовидная железа и др. помещают в гистологические кассеты для предотвращения их выпадения (рис. 3). При заборе полых органов целесообразно ввести в просвет фиксатор или вырезать его, оставив интересующий участок нетронутым. Плоские фрагменты (стенка мочевого пузыря, диафрагма, стенка желудка) могут скручиваться и должны быть помещены на впитывающую прокладку. Это может быть поролоновая прокладка для гистологических кассет, если образец небольшой, или картон, если образцы большие (материал просто укладывается на подложку и не требует дополнительной фиксации иглами или стежками) (рис. 4). При выборе мышц важно зафиксировать мышечные волокна, так как при химической фиксации мышцы сжимаются, что повлияет на другой микроскопический вид, поэтому мышцы следует фиксировать на картонной или деревянной основе (можно шпателем). древесина). ) с помощью специальных мышечных игл или щипцов.

После того, как ткань перестает «жить» (отделенные от тела ткани не могут существовать без особых условий), она начинает разрушаться собственными ферментами и бактериями, потому что для того, чтобы материал сохраниться, его надо ремонтировать. Фиксацию следует проводить сразу после забора (исключением может быть срочное гистологическое исследование замороженного материала, о котором будет сказано далее, и в этом случае проводится холодовая фиксация). Наиболее распространенным методом фиксации является химическая фиксация различными веществами. Фиксация всегда приводит к большим или меньшим изменениям структуры и объема ткани, выраженность которых зависит от рН фиксатора, его концентрации, температуры, продолжительности воздействия и других факторов. Концентрация ионов водорода в фиксаторе должна соответствовать концентрации в тканях, поэтому фиксатор должен иметь рН, близкий к нейтральному. Слишком длительная фиксация приводит к значительному уплотнению материала, что еще больше усложняет его обработку (к проблеме бессрочного хранения зафиксированного материала).

Рассмотрим некоторые фиксаторы:

• Этиловый спирт: Иногда предпринимаются попытки использовать этот фиксатор в отсутствие других химических веществ. Быстро восстанавливают ткани, осаждают белки, удаляют жиры, иногда используются для обнаружения гликогена, железа, амилоида. Главный его недостаток — сильное чрезмерное высыхание и уплотнение тканей, поэтому фиксация в спирте не должна превышать одних суток. Также стоит иметь в виду, что фиксация спиртом будет несколько отличаться от фиксации формалином, поэтому всегда следует проверять, допустимы ли в вашей лаборатории этанол или другие фиксаторы на основе спирта.
• Специальные фиксирующие жидкости:
  • Фиксатор Буэна чаще всего используется в экспериментальной патологии. Содержит пикриновую кислоту, окрашивающую образец, не мешающую дальнейшей работе с ним. Время фиксации от 1 до 24 часов, после чего материал промывают и переводят в спирт.
  • Гора Дэвидсона. Содержит формалин, этанол и ледяную уксусную кислоту. Приводит к быстрому обесцвечиванию тканей, затрудняя дальнейшую работу с ними. Фиксация не должна превышать 24 часов. Он используется в экспериментальной патологии, очень подходит для фиксации глаз лабораторных грызунов.
  • Формалин (водный раствор формальдегида, стабилизированный метанолом) является самым дешевым и наиболее широко используемым фиксатором. Используется 10% нейтральный забуференный формалин (указано только процентное содержание формальдегида). Если в лабораторных требованиях не указан другой фиксатор, он всегда используется для гистологического исследования. В небуферизованных водных растворах формальдегид со временем превращается в муравьиную кислоту, метиловый спирт и ацетон, что ухудшает качество фиксации, как и выпадение белого осадка параформальдегида. Кроме того, забуференный формалин лучше сохраняет антигенные свойства ткани. Не забывайте, что формалин имеет сильный и специфический запах, раздражает слизистые оболочки, канцерогенен, поэтому любые работы с несъемными тканями производите только в перчатках и только в вытяжном шкафу. При отборе материала для гистологического и цитологического исследований одновременно сосуды с цитологией не должны подвергаться воздействию паров формалина, необходимо максимально разделять наличие этих двух видов материала. Время фиксации 24-48 часов при комнатной температуре.

Соотношение объема фиксатора и фиксируемой ткани должно быть не менее 1:10-1:20.
Объем жидкости обычно ограничивается размером тары (рис. 5), поэтому при сборе материала убедитесь, что выбранная тара имеет соответствующий объем, который обычно указан на упаковке (объем образца). можно оценить визуально, по сравнению с объемом шприцев и др.). Убедитесь, что крышка контейнера плотно закрыта. Не используйте очки с узким горлышком, так как после фиксации материал утолщается и не снимается с таких очков (очки в таких в некоторых случаях ломается или разрезается). Стеклянные контейнеры не всегда идеальны, так как они могут разбиться во время транспортировки. Контейнер можно поместить в пластиковый пакет (пакеты с клипсами или специальные пакеты для биоанализа), чтобы предотвратить проливание фиксатора и загрязнение окружающей среды. Следить за тем, чтобы образец не замерзал во время транспортировки (при высокой вероятности замерзания в формалин можно добавить изопропиловый спирт в соотношении 1 часть спирта на 10 частей формалина). Замораживание образца приводит к изменению структуры ткани и часто к невозможности гистологической оценки, поэтому размороженные образцы не подходят для гистологического исследования.
При фиксации необходимо следить за тем, чтобы органы, расположенные на дне или на краю контейнера, были полностью зафиксированы (поверхность, обращенная ко дну, может прилипнуть и не будет зафиксирована, для предотвращения этого материал должен быть встряхивают или «очищают» от дна). При сильном наполнении кровью (например, в селезенке) кровь разбавляет фиксатор, поэтому требуется больший объем фиксатора, иначе орган может быть вымыт. Для этого орган помещают в соответствующий объем фиксатора (как обычно 1:10), но через 12 часов фиксатор заменяют новым.

Выводы

Информация, изложенная в данной статье, достаточно проста, но, к сожалению, упомянутые ниже важные правила часто игнорируются врачами и поэтому исследование малоинформативно.

• Материал следует зафиксировать сразу после взятия пробы (до 30 минут).
• Для фиксации используйте только 10% нейтральный забуференный формалин (если лаборатория не указала использование другого фиксатора).
• Толщина образца не должна превышать 1-2 см (используйте линейку для измерения толщины образцов).
• Соотношение фиксации тканей должно составлять от 1:10 до 1:20.
• Нет необходимости замораживать образцы для гистологического исследования.

Продолжение

Источник